１四个品种盆栽小菊组培体系的建立

 

本试验所用材料为未成熟花材，在操作过程中极易污染。主要原因有：材料（花瓣）在空气中暴露，本身受到环境污染，并且花瓣形状易藏污纳垢。花瓣的细胞组织较少，处理时间过长，否则组织易受到伤害。因此，通过以下两点来降低污染率：

 

（１）选择开花时间短，未受到过机械伤害，并且没有病虫害的切花；

 

（２）把握升汞消毒的时间。试验结果表明：升汞处理ｌＯｍｉｎ为最优处理，既能有效降低污染率，也能令花瓣保持旺盛的生长势。

 

不同植株在不同的发育时期形成的不同器官细胞潜能也不同，这一特点表现在它们在培养过程中再生能力存在明显差异，本试验以四个品种盆栽小菊的花瓣作为外植体，从愈伤组织诱导到幼苗增殖，不同品种盆栽小菊之间既存在相似点，也具有差异性，这一结论与晨卉试验结果一致［１８］。愈伤分化中ＭＳ＋ＮＡＡ１．２ｍｇ／Ｌ＋６－ＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ＋ＴＤＺ０．４ｍｇ／Ｌ为盆栽小菊“ＣｈｒｙｓｔａｌＰｉｎｋ”和“ＬｉｔｔｌｅＲｏｃｋ”最佳培养基配方，诱导率分别为７４．５６％和２８．８７％。

 

盆栽小菊“ＲａｉｎｂｏｗＷｏｒｔｈ”最佳愈伤分化培养基配方为ＭＳ＋ＮＡＡ１．２ｍｇ／Ｌ＋６－ＢＡ１．５ｍｇ／Ｌ＋ＴＤＺ０．２ｍｇ／Ｌ，愈伤组织诱导率为７７．２１％。盆栽小菊品种“ＣｈｒｙｓｔａｌＢｒｏｎｚｅ”花瓣的最佳愈伤组织诱导培养基配方为ＭＳ＋ＮＡＡ０．３ｍｇ／Ｌ＋６－ＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ＋ＴＤＺ０．４ｍｇ／Ｌ，诱导率为６２．２３％。

 

花器官诱导再生器官过程中，能诱导再生花瓣的生长素及细胞分裂素的浓度范围很大，ＮＡＡ的浓度从Ｏ．ｌｍｇ／Ｌ到ｌｍｇ／Ｌ以及６－ＢＡ的浓度从ｌｍｇ／Ｌ到３ｍｇ／Ｌ范围内，均可再生花瓣，只是频率不同，这与前人对菊花培养研宄一致１４１＊４３１。在花瓣愈伤组织诱导过程中发现，花瓣在经过膨大在花瓣中下部边缘长出愈伤颗粒，中上部只膨大。不同品种诱导愈伤组织的难易程度也不尽相同，本次试验四个品种由易到难的顺序依次是ＲａｉｎｂｏｗＷｏｒｔｈ、ＣｈｒｙｓｔａｌＰｉｎｋ、ＣｈｒｙｓｔａｌＢｒｏｎｚｅ、ＬｉｔｔｌｅＲｏｃｋ。

 

在用花瓣作为外植体进行组织培养时，虽然愈伤组织诱导率较高，但是不定芽诱导率比以茎段、茎尖作为外植体时偏低，并且容易产生玻璃化苗，这也是前人在对花瓣进行培养时的一大难题。在组培快繁中，高激素培养基虽然能提高繁殖系数，也能导致变异及玻璃苗现象的增加；而在低激素培养基上快繁的株系遗传稳定性好，但繁殖速度太慢，不符合快繁要求，这与曾凡力等研宂一致［３Ｗ６１。玻璃苗现象在菊花的组培快繁中较为普遍，一旦发生，一般需及时剔除，不然会影响组培苗的质量和快繁速度。

 

生根培养时，去除幼苗基部的愈伤组织，带有愈伤组织会抑制根的正常生长。在生根培养基中添加活性炭生根率略低，生长出的根较健壮，泛绿色。在不添加任何激素的ＭＳ培养基中可以正常生根，但根的品质较不稳定，有时产生极粗短不正常根。１／２ＭＳ培养基中生根较困难，但在添加一定量ＮＡＡ以后根系生长正常。

 

ＮＡＡ浓度为０．２ｍｇ／Ｌ时最有利于促进根系的生长，当ＮＡＡ浓度达到〇．４ｍｇ／Ｌ时，根的生长反而受到了一定程度的抑制。所以ＭＳ＋ＮＡＡ０．２ｍｇ／Ｌ是多数盆栽小菊的生根培养基配方，添加活性炭的生根培养基中根呈绿色，粗细较正常，而未添加活性炭的ＭＳ培养基中根呈白色和黄色，且不添加活性炭的生根培养基中的平均根长长于添加活性炭的生根培养基。

 

由于组培苗瓶苗生长的环境湿润并且洁净，直接将组培苗从瓶中移栽到盆里幼苗会难以适应，因此在移栽前我们需要对它进行炼苗。通过试验发现移栽之前将瓶苗瓶盖打开并覆盖湿润报纸进行炼苗对瓶苗移栽的成活起到较好的作用，透水透气性良好的珍珠岩中瓶苗的成活率显著高于其他基质，并且在移栽后进行覆盖薄膜持续一周，保持幼苗生长环境的温度和湿度，提高移栽成活率。