基于表型和SRAP标记的盆栽菊遗传多样性分析
摘要:基于20个表型性状和相关序列扩增多态性(标记技术对30个国外引进盆栽菊品种遗传多样性进行研究。结果表明,参试盆栽菊品种表型变异丰富,性状变异系数为14.67%~78.25%,最低和最高变异系数分别为冠幅和舌状小花数。性状主成分分析结果显示,前5个主成分贡献率达76.68%,综合反映了花型大小、叶片形态和花色的重要性。基于表型性状的聚类分析可将30个盆栽菊品种划为3个类群:第Ⅰ类群包含14个品种;第Ⅱ类群包含2个品种;第Ⅲ类群包含14个品种。表型性状的聚类结果与花径和观花期有一定联系。
SRAP分析筛选到11对多态性引物,获得1866个多态性位点,多态性比例为92.61%。品种间的遗传相似系数为0.67~0.85,表明30个品种存在一定的遗传变异。基于品种间遗传距离构建的NJ进化树结果显示,30个盆栽菊品种可划分为3个类群:第Ⅰ类群包含2个亚群,共17个品种;第Ⅱ类群包含10个品种;第Ⅲ类群包含3个品种。2种分类方法均将研究对象分为3个类群,但这3个类群的品种组成并不一致,推测可能和菊花材料本身复杂的遗传背景与试验选材的局限性有关。
SRAP分析筛选到11对多态性引物,获得1866个多态性位点,多态性比例为92.61%。品种间的遗传相似系数为0.67~0.85,表明30个品种存在一定的遗传变异。基于品种间遗传距离构建的NJ进化树结果显示,30个盆栽菊品种可划分为3个类群:第Ⅰ类群包含2个亚群,共17个品种;第Ⅱ类群包含10个品种;第Ⅲ类群包含3个品种。2种分类方法均将研究对象分为3个类群,但这3个类群的品种组成并不一致,推测可能和菊花材料本身复杂的遗传背景与试验选材的局限性有关。
菊花(Chrysanthemum×morifoliumRamat.)起源于中国,花型、花色和株型等千姿百态,品种资源异常丰富。据报道,全世界菊花品种约有20000~30000种,中国约有3000多种[1]。栽培菊花大多为六倍体(2n=6x=54)或非整倍体,基因组高度杂合且十分庞大(约12.381~24.802Gb),遗传背景非常复杂[2]。菊花种质资源的鉴定、保存和评价是生产利用和选育菊花新品种的基础,对菊花品种更新和产业升级具有重要意义。
国内外有众多学者先后对菊花种质资源进行了表型性状研究,并对菊花种质资源进行分析和整理,为加快优良种质资源的利用和菊花育种奠定了坚实基础[3-6]。近年来,随着生物技术的快速发展,如RAPD[7-8]、AFLP[9-10]、ISSR[11-12]、SSR[13-15]和SRAP[16-19]等多种分子标记技术也先后应用于菊花种质资源遗传多样性研究中,结果显示菊花在基因型上有丰富的遗传多样性。然而,结合表型性状和SRAP分子标记对盆栽小菊品种进行遗传多样性研究还鲜见报道。
国内外有众多学者先后对菊花种质资源进行了表型性状研究,并对菊花种质资源进行分析和整理,为加快优良种质资源的利用和菊花育种奠定了坚实基础[3-6]。近年来,随着生物技术的快速发展,如RAPD[7-8]、AFLP[9-10]、ISSR[11-12]、SSR[13-15]和SRAP[16-19]等多种分子标记技术也先后应用于菊花种质资源遗传多样性研究中,结果显示菊花在基因型上有丰富的遗传多样性。然而,结合表型性状和SRAP分子标记对盆栽小菊品种进行遗传多样性研究还鲜见报道。
本研究基于表型性状和SRAP分子标记技术,对国外引进的30份盆栽菊花品种资源进行遗传多样性分析,探讨其遗传多样性在形态和DNA水平上的关联,旨在为盆栽菊杂交育种过程中亲缘关系分析、杂交亲本的选配提供一定的参考。
1材料与方法
1.1材料
试验材料为课题组从国外引进的30个盆栽小菊品种(表1)。2017年下半年栽植于广州市白云区寮采村白云现代农业示范基地。SRAP引物为Li等[20]公布的通用引物,正/反向引物各8条,
共产生64对引物组合。所有引物经荧光标记,供机器读图。
1.2方法
1.2.1表型性状的测定
本试验选取14个数量性状(花径、花数、观花期、花梗长、头状花序高度、舌状小花长度、舌状小花宽度、叶长、叶宽、叶数、株高、茎粗、冠幅、节间距)和6个质量性状与多态性状(花色、花心颜色、叶缘裂刻深浅、茎颜色、叶基部形态和抗旱性)共20个表型性状,依据《植物新品种特异性、一致性和稳定性(DUS)测试指南—菊花》(中华人民共和国农业行业标准NY/T2228–2012)在盛花期对各观赏性状进行观测。每个品种调查10株,每个数量性状测量3次,取平均值。变异系数(CV)=(标准差SD/平均值x)×100%。
1.2.2SRAP扩增与引物筛选
采用常规CTAB法提取菊花叶片DNA。SRAP扩增体系总体积为25μL,其中含模板DNA2μL,10×PCRbuffer(含MgCl2)2.5μL,10mmol/LdNTPs0.5μL,10μmol/L上下游引物各0.5μL,TaqDNA聚合酶0.5μL,ddH2O18.5μL。扩增反应程序为:94℃预变性5min;94℃1min,35℃1min,72℃1min,5个循环;然后再94℃1min,50℃1min,72℃1min,35个循环;最后72℃延伸10min,4℃保存。扩增产物在聚丙烯酰胺凝胶上电泳,保存电泳胶图,由北京鼎国生物技术公司完成。
1.3数据统计与处理
1.3.1表型数据的统计分析与作图
数量性状数据直接记录,质量性状数据转换成相应数字代码。具体包括:花色(白色或近白色=1,黄绿色=2,绿色=3,淡黄色=4,黄色=5,橙色=6,粉红色=7,红色=8,浅紫色=9,紫色=10);花心颜色(白色=1,绿色=2,黄绿色=3,淡黄色=4,黄色=5,橙黄色=6,橙色=7,红棕色=8,棕色=9,棕黑=10,紫黑色=11);叶柄姿态(极向上=1,向上=3,平伸=5,向下=7,下垂=9);叶基部形态(锐角=1,钝角=2,圆=3,平截=4,心形=5);叶缘裂刻深浅(浅=3,中=5,深=7);茎颜色(绿色=1,绿棕色或绿紫色=2,棕色=3,紫色=4);抗旱性(根据自然环境10d不浇水后植株叶片的萎蔫程度来评价,抗旱=5,中抗=3,不抗旱=1),将相应数值录入Excel2010。表型性状的变异分析、主成分分析和基于欧式距离的聚类分析与作图均用SPSS18.0软件完成。
1.3.2SRAP条带统计分析与作图
利用GENESCAN3.1软件分析保存的胶图。参照荧光标记Marker(Rox500)大小(70、80、90、100、120、140、160、180、190、200、220、240、260、280、300、320、340、360、380、400、425、450、475、490、500bp,共25条带)在70~500bp范围内每2bp读1次数,共读取216个数(相当于216个位点)。而后通过Binthere软件将提取的片段大小结果转变为0-1矩阵(有带的记为“1”,无带的记为“0”)。Excel2010统计总位点数和多态性位点数,计算多态性比率。用MEGA-X软件根据遗传距离进行NJ(neighborjoining)聚类分析和作图。